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干货|一文搞定干细胞培养全流程(基质胶)

2026-02-06

干细胞(Stemcells)是指未分化的或部分分化的细胞,具有再生各类组织器官的潜在功能,被称为“万用细胞”。干细胞研究已成为重要的科研方向,在疾病治疗、创伤修复等多个领域发挥重要作用。今天我们就以人胚胎干细胞(hESC)为例,带大家了解利用基质胶培养干细胞的整个流程。

一、复苏

详细步骤如下:

1.融化

稀释前将Arcegel基质胶(hESC验证, LDEV)和适量体积的DMEM/F12培养基 放入4℃冰箱过夜融化

2.混匀

将融化的Arcegel基质胶(hESC验证,无LDEV)和DMEM/F12从冰箱取出,用预冷的10ml移液管吸取适量DMEM/F12加入装有Arcegel基质胶(hESC验证,无LDEV)的容器中混匀,4℃保存,1个月内使用,-20或-80℃可保存半年以上。

3.稀释

吸取适量稀释的Arcegel基质胶(hESC验证,无LDEV)(稀释比例按1:80-1:160,浓度约为10mg/ml)置于6孔板中,轻轻摇晃,使Arcegel基质胶(hESC验证,无LDEV)均匀平铺于孔板底部,培养箱放置1h以上,种细胞前弃掉,之后每次传代也要先培养器皿内铺胶包被。

4.复苏

将hESC细胞冻存管从液氮中取出,置于37℃水浴中使之复苏,取出后拿到超净台内用75%酒精擦拭冻存管旋口处及外壁,防止污染。

5.离心

将冻存管内细胞悬液转移至含3-4ml的hESC完全培养液的15ml离心管内,以1000rpm离心5min。

6.吹打

离心后将上清液吸除,轻弹离心管底,使细胞沉淀松散,加入新鲜的hESC完全培养液2-3ml,轻轻吹打一次使细胞克隆块悬浮。

7.转移

转移至已经铺好Arcegel基质胶(hESC验证,无LDEV)的6孔板中培养。

8.换液

复苏第二天不换液,第三天起每天更换hESC细胞完全培养液。

注意

复苏时不能吹打过度,不能吹打成单细胞,保持细胞克隆块状,复苏后48小时换液,期间最好不要挪动细胞。hESC复苏后可能4-5天才开始有克隆出现,7-10天传代(具体视克隆密度和大小而定)。

二、传代及培养

详细步骤如下:

1.传代

一般在复苏后第7-10天传代,之后为6-7天一次。

2.冲洗

吸除废液。用DPBS(不含钙镁离子)轻轻冲洗一遍。

3.消化

加入2-3ml的1mg/ml的干细胞专用消化液至培养瓶,轻轻晃动,使之覆盖底面,置于37℃培养箱内消化细胞。

4.脱落

显微镜下观察,直至细胞克隆脱落(一般需要3-6min)。

5.转移

将带有脱落细胞克隆的消化液转移至15ml离心管中,放置一会,待细胞克隆自然沉降后将上层吸除,加入hESC完全培养液3ml轻轻混匀,放置一会,待克隆自然沉降后将上层培养液吸除,重复一次(即hESC完全培养液漂洗2遍,沉降后吸掉上清)。

6.传代

加入hESC完全培养液3ml,用1ml移液器吹打2-3次,将克隆块吹散成大小为原来的约1/10(若想得到大小较均一的克隆块,此时可将细胞静置片刻,待细胞自然沉降后取悬浮于液体中间层的克隆块传代),传代比例根据母瓶克隆密度和大小而定,一般1:3-1:5传代(注意:传代时不能吹打过度,不能吹打成单细胞,保持细胞克隆块状,传代后48小时换液,期间最好不要挪动细胞)。传代后放入37℃培养箱培养。

7.挑除

第二天不换液,第三天起每天换液,换液前显微镜下将分化的克隆挑除。

8.培养

继续培养,每6-7天传代一次。

三、冻存

详细步骤如下:

1.漂洗

按传代的方法将细胞消化下来,漂洗后细胞沉于离心管底部(上述传代中步骤5)。

2.冷冻

冷冻比例根据母瓶克隆密℃和大小而定,一般1个T25培养瓶可冷冻1-3个冻存管。向离心管内加入1/2冷冻体积的hESC完全培养液,轻轻混匀。

3.加液

逐滴加入已经预冷(4℃)的细胞冻存液(推荐使用Cell Freezing Medium, Serum-Free无血清细胞冻存液),一边加一边轻轻晃动离心管。

4.标记

1ml移液器轻轻混匀细胞(保持克隆块,不可吹打过度),每支冻存管内加入500ul-lml细胞悬液,标记细胞信息。

5.转入

将冻存管置于程序降温盒内,-80℃过夜,转入液氮(如使用Cell Freezing Medium, Serum-Free无血清细胞冻存液,则不需要程序降温盒)。

图 hESC培养结果示意图

这就是干细胞培养的全部流程了。怎么样?今天的知识你掌握了吗?相信以后再遇到干细胞培养问题,大家就不会犯难啦!

 

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